Biotecnologie

Principi di Bioeconomia (6 cfu)
Biologia Cellulare ed Animale (12 cfu)
Chimica Organica (6 cfu)
Fisica (9 cfu)
Abilità linguistiche (Inglese) (3 cfu)
Chimica Generale e Stechiometria (9 cfu)
Matematica (9 cfu)
Informatica per le Biotecnologie (6 cfu)
Metodologie Biochimiche (6 cfu)
Istologia e Anatomia umana (9 cfu)
Biologia e Fisiologia vegetale (12 cfu)
Genetica e Genomica (12 cfu)
Biochimica (9 cfu)
Biologia molecolare e Microbiologia (12 cfu)
Fisiologia Cellulare e dei Sistemi (9 cfu)
Prova finale (6 cfu)
Immunologia e tecniche immunologiche (6 cfu)
Virologia generale e molecolare (6 cfu)
Farmacologia generale e fondamenti di chimica farmaceutica (6 cfu)
Biotecnologie per il Miglioramento genetico (9 cfu)
12 cfu a scelta nel gruppo GR1
Osservazione microscopica di tessuti umani (3 cfu)Fissazione di campioni biologici. Tecniche di inclusione. Sezioni criostatiche. Colorazioni di base in istologia. I principi della istochimica: colorazione dei principali costituenti dei tessuti: il metodo del PAS, la metacromasia, i coloranti liposolubili e coloranti vitali. Principi e principali applicazioni di istochimica enzimatica, immunoistochimica, immunofluorescenza, immunocitochimica. Gli anticorpi monoclonali e loro applicazioni in istologia. Ibridazione in situ, PCR in situ: principi e principali applicazioni negli studi morfologici. Cenni sulle tecniche Istoautoradiografiche. I principali tipi di microscopio ottico: potere di risoluzione, misure in istologia. Applicazione della istochimica e della immunoistochimica a preparati di microscopia elettronica. La microscopia elettronica a trasmissione ed a scansione: cenni sulle tecniche di preparazione dei campioni e loro impiego negli studi morfologici. Applicazione della istochimica e della immunoistochimica a cellule e tessuti coltivati in vitro. Il laboratorio di colture cellulari; apparecchiature, uso delle colture di cellule negli studi morfologici. Laboratorio: Osservazione al microscopio ottico e riconoscimento di preparati istologici di tessuti umani trattati con metodi istologici e istochimici (epiteli di rivestimento, epiteli ghiandolari, tessuto connettivo propriamente detto, tessuto cartilagineo, tessuto osseo, sangue, tessuto nervoso, tessuto muscolare). Visita ai laboratori di microscopia elettronica e descrizione degli strumenti.Programma di esame
Metodologie Biomolecolari (3 cfu)Costruzione di genoteche Concetto di rappresentatività. Genoteche genomiche. Preparazione dei frammenti da clonare. Tagli con enzimi di restrizione. Tagli parziali per ottenere frammenti sovrapposti. Metodi per distinguere le molecole ricombinanti. Uso di sonde marcate (a DNA e a RNA) per ibridazione. Metodologie per lo studio della localizzazione di macromolecole (visualizzazione in situ di acidi nucleici e proteine) Analisi mediante microarray e chipProgramma di esame
Enzimologia (6 cfu)L’obiettivo del corso è quello di fornire allo studente una solida base di conoscenze della catalisi enzimatica tale da metterlo in condizione di affrontare lo studio di caratterizzazione di un enzima ed analizzare il suo comportamento sia a livello di funzione enzimatica cellulare sia nell’affrontare problematiche connesse all’uso degli enzimi in campo applicativo. Allo studio delle caratteristiche generali degli enzimi e del loro meccanismo d’azione, si affianca l’analisi cinetica di reazioni enzimatiche a diverso grado di complessità, nonché lo studio di fattori influenti sulle proprietà catalitiche e quindi sul controllo dell’attività enzimatica.Programma di esame
Biochimica Sperimentale 2 (3 cfu)Il corso è in continuazione con Biochimica sperimentale 1 ed è da intendersi personalizzato per ciascun studente al quale verrà assegnato, previo colloquio con il responsabile del corso, un problema sperimentale che prevede una fase di indagine bibliografica, una fase di acquisizione metodologica ed infine una fase di soluzione o tentativo di soluzione dell’obiettivo sperimentale. Gli studenti svolgeranno il proprio lavoro definendo essi stessi giorni e orari di attività, purché gli stessi si identifichino con il normale orario di attività della struttura dipartimentale e che comunque verranno concordati con il personale docente e ricercatore della strutturaProgramma di esame
Biochimica sperimentale 1 (3 cfu)Il corso di Biochimica sperimentale 1 è da intendersi personalizzato per ciascun studente al quale verrà assegnato, previo colloquio con il responsabile del corso, un problema sperimentale che prevede una fase di indagine bibliografica, una fase di acquisizione metodologica ed infine una fase di soluzione o tentativo di soluzione dell’obiettivo sperimentale. Gli studenti svolgeranno il proprio lavoro definendo essi stessi giorni e orari di attività, purché gli stessi si identifichino con il normale orario di attività della struttura dipartimentale e che comunque verranno concordati con il personale docente e ricercatore della strutturaProgramma di esame
Microbiologia analitica (6 cfu)Familiarizzare lo studente con l’importanza dei microrganismi e dei loro prodotti nei processi alimentari. Apprendimento delle principali tecniche di analisi microbiologiche quali campionamenti, preparazione all’analisi, conte microbiche, isolamenti su terreni differenziali, caratterizzazioni biochimiche e molecolari Programma di esame
6 cfu a scelta nel gruppo GR2
Biotecnologie dei Protisti (6 cfu)Le finalità del Corso sono quelle di fornire le conoscenze di base, le logiche di vita e le caratteristiche biologiche dei rappresentanti del primo grande salto evolutivo nella storia degli esseri viventi, i protisti, e di fornire una panoramica delle principali biotecnologie applicate ad uno degli strumenti di indagine più sofisticati e complessi nella loro duplice natura di cellula eucariotica e di individuo. Saranno presi in considerazione argomenti quali, i protisti capaci di produrre molecole difficilmente sintetizzabili, l’uso dei protisti come bioindicatori di diversi tipi di habitat, i protisti nei processi di depurazione biologica delle acque di scarico civili e industriali, i sistemi di produzione algale come fonte di prodotti e sostanze utili in campo farmacologico, cosmetico e nutrizionale. Programma di esame
Biotecnologie cellulari (6 cfu)In questo corso verranno analizzati in modo critico i principi, gli strumenti e gli scopi delle biotecnologie cellulari. I seguenti argomenti verrano affrontati: strumenti di analisi di singole cellule (microscopia, citometria di flusso e analisi del trascrittoma). Colture di cellule eucariotiche: colture primarie e linee cellulari stabilizzate. Senescenza cellulare. Telomeri e telomerasi. Principali metodologie di trasferimento genico. Strategie per lo studio dell’espressione genica condizionale. Tecniche di genome editing (CRISPR/Cas9). Cellule staminali embrionali ed adulte. Metodologie di riprogrammazione somatica: le cellule iPS. Rigrogrammazione diretta. Sistemi innovativi di coltura cellulare: gli organoidi. La terapia cellulare sostitutiva e l’ingegneria tissutale. Programma di esame